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急性癲癇動物模型
當前位置:首頁 > 人類疾病動物模型目錄 > 神經系統(tǒng)模型 > 急性癲癇動物模型

前言

癲病(epilepsy)是一種以大腦局部病灶突發(fā)性的一次高頻放電并向周圍組織擴散為特征的大腦功能障礙,同時伴隨短暫的運動、感覺、意識和自主神經功能異常,腦電圖有明顯改變。WHO于2005年公布的資料顯示全世界有5000萬的癲病患者,平均年發(fā)病率為0.5‰~1‰。涉及癲癇的研究如細胞電生理記錄、細胞內微成分分析以及組織學追蹤技術等,都不太可能直接在人腦里面進行;抗癲病藥物的開發(fā)和研究,也不可能輕易在人體中進行。因此,在研究癲癇病理病生改變和篩選抗癲癇藥物時,往往依賴于動物實驗。

一個理想癲癇模型應具有和人類癲癇相似的發(fā)生、發(fā)展的過程,至少應具備如下特征:①具有諸如神經元丟失、膠質細胞增生、軸突絲狀芽生和突觸重建等與人類癲病相似的病理學變化;②在初始刺激和自發(fā)性癲病發(fā)作之間有較為固定的潛伏期(數天至數周);③模型能在一定時間內保持大腦神經元興奮性持續(xù)增高。

直至目前,尚無一種動物癲癇模型能夠完全復制人類癲癇。另外,由于癲病臨床發(fā)作形式多樣的特點,不能僅用一種模型進行癲病研究。癲癇動物模型的選擇取決于包括研究目的、模型對應的臨床發(fā)作類型、對模型的熟悉程度及模型制備的難易等因素。

根據誘發(fā)癲癇的時程、遺傳背景和藥物抵抗性等特點,癲癇的疾病動物模型可分為急性癲病模型、慢性癲病模型、自發(fā)性癲病模型。

部分造模方法

使用動物:小鼠、大鼠

【造模機制】

在動物兩耳或眼球部位放置電極,以強電流通過電極對腦部進行短時間刺激,使動物產生雙后肢強直性驚厥。

【模型方法】

用電休克儀或藥理生理實驗多用儀,導線引出交流電,將輸出線上連接鍔魚夾,以生理鹽水濕潤后,分別夾于小鼠或大鼠雙耳,或用稍凹圓盤狀角膜電極接觸雙角膜(角膜用丁卡因麻醉),隨即通電,即可使小鼠或大鼠發(fā)生典型的前肢屈曲、后肢伸直的強直性驚厥。電刺激參數一般為小鼠50mA、大鼠150mA、60Hz、80~120V(大鼠用180V),刺激時間為0.2~03秒。驚厥過程可分為潛伏期、強直期、陣攣期及驚厥后抑制期。觀察指標:以動物是否出現后肢強直為觀察指標,若某種藥物能阻止其發(fā)生,說明該藥具有抗MES作用。

【模型特點】

MES模型是使用較多屈研究較為透徹的模型之一。常用于模擬人類的強直陣攣癲癇大發(fā)作,并用于抗強直-陣攣癲癇大發(fā)作的藥物篩選。經典的抗癲病藥物苯妥英鈉就是通過MES模型發(fā)現的。

【模型評估和應用】

MES癲癇模型制備方法簡單,且有比較高的篩選抗癲病化合物的效率。急性癲癇模型也是有其不足之處的:MES模型對作用于離子型通道的藥物作用效果顯著,可能忽略了其他有抗癲癇作用的藥物(如氨基己酸、噻加賓等);MES模型不適合抗部分癲癇發(fā)作的藥物的篩選,如,MES模型提示N-甲基-D-天冬氨酸受體(N-methyl-D-aspartic acid, NMDA)受體的拮抗劑有效,但是該拮抗劑在點燃(kindling)模型及臨床試驗中都沒有明確的抗癲癇作用。需要強調的是,急性癲癇模型不能模仿人類癲癇發(fā)生發(fā)展的整個過程,更不能模擬難治性癲癇、藥物抵抗性癲癇的病理生理改變過程。

 

 

參考文獻

1.Andrè V, Dube C, Francois J, et al. Pathogenesis and pharmacology of epilepsy in the lithium-pilocarpine model. Epilepsia,2007,48 (Suppl 5):41-47

2.Gareri P, Condorelli D, Bellua.rdo N, el al. Antiabsence effects of carbenoxolone in two genetic animal models of absence epilepsy (WAG/Rij rats and lh/lh mice).Neuropharmacology, 2005, 49 (4):551-563

3.Holmes GL. Animal model studies application to human patients. Neurology, 2007, 69 (24 Suppl 3): S28-32

4.Jefferys JG. Models and mechanisms of experimental epilepsies. Epilepsia, 2003, 44 (Suppl 12):44-50

5.Löscher W,Leppik IE. Critical re-evaluation of previous preclinical strategies for the cliscovery and the development of new anliepileplic drugs. Epilepsy Res, 2002, 50 (1-2):17-20

6.Löscher W,Schmidt D.Stralegies in aatiepileptic drug development: is rational drug design superior to random screening and structural variation?Epilepsy Res, 1994, 17 (2):95-134

7.Wang Y, Zhou D, Wang B, el al. A kindling model of pharmacoresislanl temporal lobe epilepsy in SpragueDawley rats induced by Coriaria lactone and its possible mechanism. Epilepsia,2003,44(4):475-488

8.White HS. Preclinical development of antiepileptic drugs: past, present, and future directions. Epilepsia, 2003, 44 (Suppl 7):2-8

模型目錄
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急性癲癇動物模型

前言

癲病(epilepsy)是一種以大腦局部病灶突發(fā)性的一次高頻放電并向周圍組織擴散為特征的大腦功能障礙,同時伴隨短暫的運動、感覺、意識和自主神經功能異常,腦電圖有明顯改變。WHO于2005年公布的資料顯示全世界有5000萬的癲病患者,平均年發(fā)病率為0.5‰~1‰。涉及癲癇的研究如細胞電生理記錄、細胞內微成分分析以及組織學追蹤技術等,都不太可能直接在人腦里面進行;抗癲病藥物的開發(fā)和研究,也不可能輕易在人體中進行。因此,在研究癲癇病理病生改變和篩選抗癲癇藥物時,往往依賴于動物實驗。

一個理想癲癇模型應具有和人類癲癇相似的發(fā)生、發(fā)展的過程,至少應具備如下特征:①具有諸如神經元丟失、膠質細胞增生、軸突絲狀芽生和突觸重建等與人類癲病相似的病理學變化;②在初始刺激和自發(fā)性癲病發(fā)作之間有較為固定的潛伏期(數天至數周);③模型能在一定時間內保持大腦神經元興奮性持續(xù)增高。

直至目前,尚無一種動物癲癇模型能夠完全復制人類癲癇。另外,由于癲病臨床發(fā)作形式多樣的特點,不能僅用一種模型進行癲病研究。癲癇動物模型的選擇取決于包括研究目的、模型對應的臨床發(fā)作類型、對模型的熟悉程度及模型制備的難易等因素。

根據誘發(fā)癲癇的時程、遺傳背景和藥物抵抗性等特點,癲癇的疾病動物模型可分為急性癲病模型、慢性癲病模型、自發(fā)性癲病模型。

部分造模方法

使用動物:小鼠、大鼠

【造模機制】

在動物兩耳或眼球部位放置電極,以強電流通過電極對腦部進行短時間刺激,使動物產生雙后肢強直性驚厥。

【模型方法】

用電休克儀或藥理生理實驗多用儀,導線引出交流電,將輸出線上連接鍔魚夾,以生理鹽水濕潤后,分別夾于小鼠或大鼠雙耳,或用稍凹圓盤狀角膜電極接觸雙角膜(角膜用丁卡因麻醉),隨即通電,即可使小鼠或大鼠發(fā)生典型的前肢屈曲、后肢伸直的強直性驚厥。電刺激參數一般為小鼠50mA、大鼠150mA、60Hz、80~120V(大鼠用180V),刺激時間為0.2~03秒。驚厥過程可分為潛伏期、強直期、陣攣期及驚厥后抑制期。觀察指標:以動物是否出現后肢強直為觀察指標,若某種藥物能阻止其發(fā)生,說明該藥具有抗MES作用。

【模型特點】

MES模型是使用較多屈研究較為透徹的模型之一。常用于模擬人類的強直陣攣癲癇大發(fā)作,并用于抗強直-陣攣癲癇大發(fā)作的藥物篩選。經典的抗癲病藥物苯妥英鈉就是通過MES模型發(fā)現的。

【模型評估和應用】

MES癲癇模型制備方法簡單,且有比較高的篩選抗癲病化合物的效率。急性癲癇模型也是有其不足之處的:MES模型對作用于離子型通道的藥物作用效果顯著,可能忽略了其他有抗癲癇作用的藥物(如氨基己酸、噻加賓等);MES模型不適合抗部分癲癇發(fā)作的藥物的篩選,如,MES模型提示N-甲基-D-天冬氨酸受體(N-methyl-D-aspartic acid, NMDA)受體的拮抗劑有效,但是該拮抗劑在點燃(kindling)模型及臨床試驗中都沒有明確的抗癲癇作用。需要強調的是,急性癲癇模型不能模仿人類癲癇發(fā)生發(fā)展的整個過程,更不能模擬難治性癲癇、藥物抵抗性癲癇的病理生理改變過程。

 

 

參考文獻

1.Andrè V, Dube C, Francois J, et al. Pathogenesis and pharmacology of epilepsy in the lithium-pilocarpine model. Epilepsia,2007,48 (Suppl 5):41-47

2.Gareri P, Condorelli D, Bellua.rdo N, el al. Antiabsence effects of carbenoxolone in two genetic animal models of absence epilepsy (WAG/Rij rats and lh/lh mice).Neuropharmacology, 2005, 49 (4):551-563

3.Holmes GL. Animal model studies application to human patients. Neurology, 2007, 69 (24 Suppl 3): S28-32

4.Jefferys JG. Models and mechanisms of experimental epilepsies. Epilepsia, 2003, 44 (Suppl 12):44-50

5.Löscher W,Leppik IE. Critical re-evaluation of previous preclinical strategies for the cliscovery and the development of new anliepileplic drugs. Epilepsy Res, 2002, 50 (1-2):17-20

6.Löscher W,Schmidt D.Stralegies in aatiepileptic drug development: is rational drug design superior to random screening and structural variation?Epilepsy Res, 1994, 17 (2):95-134

7.Wang Y, Zhou D, Wang B, el al. A kindling model of pharmacoresislanl temporal lobe epilepsy in SpragueDawley rats induced by Coriaria lactone and its possible mechanism. Epilepsia,2003,44(4):475-488

8.White HS. Preclinical development of antiepileptic drugs: past, present, and future directions. Epilepsia, 2003, 44 (Suppl 7):2-8